С 9:00 до 21:00 Без выходных

Ген SLC35C1

Ген SLC35C1

Ген SLC35C1 (Solute Carrier Family 35 Member C1) - Кодирует транспортер GDP-фукозы, обеспечивающий перенос GDP-фукозы из цитоплазмы в аппарат Гольджи.

Ген SLC35C1 участвует в фукозилировании гликопротеинов и гликолипидов, поддерживая иммунные функции, клеточную адгезию и нейронное развитие.


1. Основные характеристики гена

Название:

  • Ген SLC35C1 (Solute Carrier Family 35 Member C1).

Синонимы:

  • FUCT1, GFT, CDG2C.

Локализация:

  • Ген SLC35C1 находится на хромосоме 11p11.2 (человек).

Размер гена:

  • Ген SLC35C1 имеет размер около 10 kb и содержит 5 экзонов.

Кодируемый белок:

  • Белок GDP-fucose transporter 1 состоит из 364 аминокислот.

Функция:

  • Белок транспортирует GDP-фукозу (GDP-Fuc) из цитоплазмы в аппарат Гольджи.

Тканевая экспрессия:

  • Высокая экспрессия гена SLC35C1 наблюдается в лейкоцитах, печени, почках и легких.
  • Умеренная экспрессия гена SLC35C1 выявлена в мозге, сердце и коже.

Клеточная локализация:

  • Белок локализуется в мембране аппарата Гольджи.

UniProt ID:

  • Белок имеет UniProt ID Q96A29.

NCBI Gene ID:

  • Ген SLC35C1 имеет NCBI Gene ID 55343.

Ensembl ID:

  • Ген SLC35C1 имеет Ensembl ID ENSG00000157322.


2. Структура белка

Первичная структура:

  • Белок состоит из 364 аминокислот (человек).

Вторичная структура:

  • Белок содержит 10 трансмембранных α-спиральных доменов.

Третичная структура:

  • Белок представляет собой мультимембранный транспортер с каналом для GDP-фукозы.

Посттрансляционные модификации:

  • Белок подвергается гликозилированию (N-гликозилирование) и возможному фосфорилированию.

Ключевые домены:

  • Белок содержит трансмембранные домены и субстрат-связывающий сайт.

Альтернативный сплайсинг:

  • Ген SLC35C1 имеет ограниченные данные об альтернативном сплайсинге, возможны изоформы с различиями в C-концевом участке.
  • Ген SLC35C1 (GDP-fucose transporter 1) специфичен для транспорта GDP-фукозы, необходимой для фукозилирования гликопротеинов и гликолипидов, что отличает его от других членов семейства SLC35, транспортирующих нуклеотид-сахара, такие как UDP-GlcNAc и PAPS.


3. Функции и физиологическая роль

  • Ген SLC35C1 кодирует белок GDP-fucose transporter 1, который переносит GDP-фукозу из цитоплазмы в люмен аппарата Гольджи, где она используется фукозилтрансферазами для добавления фукозы к гликопротеинам и гликолипидам.
  • Белок участвует в фукозилировании, обеспечивая синтез фукозилированных гликанов, таких как антигены группы крови (H, Lewis), селектиновые лиганды и Notch-рецепторы.
  • Белок формирует α-1,3- и α-1,6-фукозильные связи, критически важные для клеточной адгезии и сигнализации.
  • Фукозилированные гликаны, поддерживаемые белком, необходимы для лейкоцитарного роллинга и миграции в очаги воспаления в иммунной системе.
  • Фукозилированные молекулы, поддерживаемые белком, участвуют в межклеточных взаимодействиях, обеспечивая клеточную адгезию.
  • Фукозилирование Notch-рецепторов, регулируемое белком, играет роль в нейронном развитии.
  • Фукозилированные гликопротеины, поддерживаемые белком, поддерживают функции лейкоцитов и эпителия, обеспечивая гомеостаз.

Механизм действия:

  • Белок SLC35C1 функционирует как антипортер, обменивая GDP-фукозу в аппарат Гольджи на GMP или GDP в цитоплазму.
  • Уровень GDP-фукозы, синтезируемой ферментами GMD и FX, влияет на активность транспортера.
  • Метилирование промотора гена SLC35C1 может снижать его экспрессию в опухолях.

Взаимодействия:

  • Фукозилтрансферазы (FUT1–FUT11) используют GDP-фукозу для фукозилирования.
  • Ферменты GMD и FX обеспечивают биосинтез GDP-фукозы в цитоплазме.
  • Ген SLC35A1 совместно регулирует гликозилирование в аппарате Гольджи, транспортируя CMP-сиаловую кислоту.


4. Мутации и связанные патологии

  • Мутация c.439C>T (p.R147C) — миссенс, снижает транспорт GDP-фукозы, вызывает врожденное расстройство гликозилирования IIc (CDG-IIc, LADII), наследуется по аутосомно-рецессивному типу, приводит к нарушению фукозилирования, нарушению лейкоцитарной адгезии, рецидивирующим инфекциям и задержке развития (Lühn et al., 2001).
  • Мутация c.923_924delTC (p.L308fs) — делеция, усекает белок, приводит к потере функции, вызывает CDG-IIc (LADII), наследуется по аутосомно-рецессивному типу, сопровождается тяжелым фенотипом: иммунодефицит, психомоторная задержка, дисморфия (Marquardt et al., 1999).
  • Мутация c.881G>A (p.G294E) — миссенс, вызывает частичную потерю функции, вызывает CDG-IIc (LADII), наследуется по аутосомно-рецессивному типу, сопровождается умеренными симптомами: инфекции, задержка роста (Helmus et al., 2006).
  • Повышенная экспрессия гена SLC35C1, связанная с эпигенетическими изменениями, усиливает фукозилирование, наблюдается в раке печени и колоректальном раке, способствует прогрессии опухолей и метастазированию, не наследуется (Mori et al., 2022).
  • Пониженная экспрессия гена SLC35C1, связанная с эпигенетическими изменениями, снижает фукозилирование, гипотетически связана с иммунными нарушениями, возможна связь с нарушением лейкоцитарной адгезии, не наследуется (Zhang et al., 2023).

Основное заболевание:

  • Врожденное расстройство гликозилирования IIc (CDG-IIc, Leukocyte Adhesion Deficiency II, LADII) проявляется рецидивирующими бактериальными инфекциями кожи и слизистых, иммунодефицитом, задержкой психомоторного развития, низким ростом, дисморфическими чертами (плоское лицо, широкий лоб), отсутствием антигенов группы крови H и Lewis.
  • Мутации нарушают транспорт GDP-фукозы, что приводит к дефициту фукозилирования селектиновых лигандов, таких как сиалил-Lewis X, необходимых для лейкоцитарного роллинга.
  • Дефект адгезии нейтрофилов вызывает указанные симптомы.
  • Режим наследования — аутосомно-рецессивный.
  • Частота заболевания крайне редкая, описано менее 100 случаев.

Другие ассоциации:

  • Повышенная экспрессия гена SLC35C1 в раке печени, колоректальном раке и раке легких коррелирует с усилением фукозилирования, способствующим метастазированию и ангиогенезу.
  • Пониженная экспрессия гена SLC35C1 может нарушать фукозилирование, влияя на опухолевый иммунитет.
  • Снижение фукозилирования, связанное с мутациями гена SLC35C1, может имитировать фенотип LADII, нарушая иммунный ответ.


5. Методы репарации ДНК для мутаций SLC35C1

  • CRISPR/Cas9 позволяет точное редактирование генома для коррекции мутаций, таких как c.439C>T и c.923_924delTC, в лейкоцитах или индуцированных плюрипотентных стволовых клетках (iPSC), обладает высокой точностью, восстанавливает функцию, но имеет риск офф-таргет эффектов, находится на начальной стадии доклинических исследований для CDG-IIc на iPSC и мышах.
  • Базовое редактирование обеспечивает точечную замену нуклеотидов, подходит для коррекции c.439C>T (p.R147C) путем замены C→T, минимизирует риск хромосомных аномалий, но ограничено типами замен, находится на начальной стадии экспериментов in vitro для гена SLC35C1.
  • Прайм-редактирование использует Cas9 с обратной транскриптазой для вставки корректирующей последовательности, подходит для коррекции делеций, таких как c.923_924delTC, или миссенс-мутаций, таких как c.881G>A, обладает универсальностью, но имеет низкую эффективность и сложность доставки, перспективно для CDG-IIc, исследуется на iPSC.
  • Генная терапия с использованием AAV-векторов доставляет функциональную копию гена SLC35C1 в гематопоэтические стволовые клетки для лечения LADII, проста в применении, но вызывает иммунный ответ и имеет ограниченную емкость AAV, находится на доклинической стадии для гена SLC35C1.
  • РНК-терапия с использованием антисмысловых олигонуклеотидов (ASO) корректирует сплайсинговые дефекты или подавляет мутантные аллели, обладает высокой специфичностью, но требует повторных введений, исследуется экспериментально для других генов.
  • Эпигенетическое редактирование модулирует экспрессию гена SLC35C1, снижая ее в опухолях, таких как рак печени, неинвазивно, но эффект временный, находится на начальной стадии исследований.

Потенциальные подходы к репарации:

  • Для CDG-IIc (LADII) CRISPR/Cas9 корректирует мутации в гематопоэтических стволовых клетках с использованием AAV-доставки (AAV6 для гематопоэтических стволовых клеток) или липидных наночастиц.
  • Генная терапия предусматривает введение полноразмерного гена SLC35C1 в гематопоэтические стволовые клетки для восстановления фукозилирования в лейкоцитах.
  • Прайм-редактирование корректирует сложные мутации, такие как c.923_924delTC, в iPSC с последующей дифференцировкой в лейкоциты.
  • Фармакологическая поддержка добавляет L-фукозу в рацион пациентов с частичной потерей функции, усиливая фукозилирование, что используется в клинической практике для LADII.
  • В онкологии эпигенетическое редактирование снижает экспрессию гена SLC35C1 в опухолях путем метилирования промотора с использованием CRISPR-dCas9.
  • РНК-терапия с использованием siRNA подавляет экспрессию гена SLC35C1 в раковых клетках.

Проблемы и перспективы:

  • Таргетинг лейкоцитов требует высокой специфичности и эффективности доставки.
  • Необходимы высокоспецифичные гайд-РНК для минимизации офф-таргет эффектов в CRISPR.
  • Репарация для CDG-IIc находится на доклинической стадии, фармакологическое лечение (L-фукоза) частично эффективно, но не устраняет причину.


6. Связанные исследования

  • Мутации гена SLC35C1, такие как c.439C>T, вызывают дефицит фукозилирования, приводя к иммунодефициту (Lühn et al., Nat Genet, 2001).
  • Пациенты с LADII имеют рецидивирующие инфекции, задержку развития, отсутствие антигенов H и Lewis (Marquardt et al., Blood, 1999).
  • Повышенная экспрессия гена SLC35C1 в раке печени усиливает фукозилирование, способствуя метастазированию (Mori et al., Cancer Sci, 2022).
  • Ген SLC35C1 транспортирует GDP-фукозу как антипортер (Lühn et al., J Biol Chem, 2004).
  • Мыши с нокаутом гена Slc35c1 воспроизводят фенотип LADII: иммунодефицит, нарушение адгезии лейкоцитов (Hellbusch et al., Mol Cell Biol, 2007).
  • Генная терапия и фармакологическое введение L-фукозы для LADII, а также эпигенетическое редактирование для онкологии (Zhang et al., Mol Ther, 2023).


7. Ресурсы для базы данных

  • NCBI Gene - Генетические данные и последовательности гена SLC35C1.
  • GeneCards - Подробные данные о функциях, взаимодействиях и патологиях гена SLC35C1.
  • UniProt - Аннотации белка (Q96A29).
  • OMIM - Данные о заболевании (CDG-IIc, LADII, 266265).
  • The Human Protein Atlas - Данные об экспрессии белка в тканях.
  • ClinVar - Данные о мутациях гена SLC35C1.
  • PubMed - Научные статьи, включая PMID: 11326280, 36103877.


8. Рекомендации для базы данных

  • Поля для хранения включают название гена SLC35C1, локализацию, ID, структуру и функцию белка, экспрессию, типы мутаций, координаты, заболевания, наследование, методы репарации ДНК, применимость, статус исследований, публикации и базы данных.
  • Инструменты анализа включают AlphaFold для моделирования структуры белка, MutPred для оценки патогенности мутаций, NGS для скрининга мутаций, CRISPR/Cas9 на iPSC и мышах для моделирования CDG-IIc.
  • Обновление данных предусматривает мониторинг PubMed, ClinVar и Ensembl для новых мутаций и методов репарации.


9. Особенности SLC35C1

  • Ген SLC35C1 играет ключевую роль в LADII, являясь одним из немногих генов семейства SLC35 с четко установленной связью с моногенным заболеванием (CDG-IIc).

Перспективы исследований:

  • Разработка генной терапии для CDG-IIc с использованием AAV или CRISPR.
  • Исследование роли гена SLC35C1 в онкологии, особенно в метастазировании.
  • Биоинформатический анализ для выявления новых мутаций и их фенотипов.
  • Углубленное изучение фармакологического подхода (L-фукоза) и его комбинации с генной терапией.


Заключение

Ген SLC35C1 - Кодирует транспортер GDP-фукозы, участвующий в фукозилировании гликопротеинов и гликолипидов.

Мутации в гене SLC35C1 вызывают врожденное расстройство гликозилирования IIc (CDG-IIc, LADII), а повышенная экспрессия ассоциируется с онкологией.

Методы репарации ДНК, включая CRISPR/Cas9 и генную терапию, перспективны для коррекции мутаций, а фармакологическое лечение L-фукозой частично эффективно.